La capnographie : intérêts et limites

La capnographie est la représentation graphique des variations de la concentration en dioxyde de carbone (CO₂) dans les gaz respiratoires.

La méthode de référence de mesure du contenu sanguin en gaz carbonique est la gazométrie sanguine, néanmoins, la mesure du CO₂ expiré par le biais de la capnographie est une méthode aisée et fiable. Chez l’homme, pour lequel les troubles respiratoires représentent plus du tiers des accidents anesthésiques, la capnographie fait partie intégrante de la surveillance anesthésique et des soins intensifs. Ainsi, l’utilisation conjointe de la capnographie et de l’oxymétrie du pouls peut éviter 93 % des accidents dus à une surveillance approximative [1, 5, 6, 7, 8, ¹³, ¹⁵, 16].

Physiologie et métabolisme du CO₂

Chez les mammifères terrestres, le CO₂ représente 5 % des gaz de l’organisme. Il est le produit terminal du métabolisme tissulaire aérobie et est éliminé par voie pulmonaire [¹³, ¹⁵, 16]. Il est transporté par la circulation sanguine sous trois formes : 60 à 70 % comme ions bicarbonates (après conversion dans les hématies par l’anhydrase carbonique), 20 à 30 % sous forme liée aux protéines et 5 à 10 % sous forme de gaz, en solution dans le plasma (évalué par la pression partielle en CO₂ dans le sang artériel ou PaCO₂). Le CO₂ est une molécule très soluble (25 fois plus que l’O₂) et au niveau pulmonaire, l’équilibre entre les pressions alvéolaire en CO₂ (PACO₂) et capillaire (PaCO₂) est obtenu en moins de 0,5 seconde par diffusion passive selon le gradient de pression et le ratio ventilation/perfusion. La PaCO₂ est donc le reflet de l’efficacité de la ventilation alvéolaire. Le gradient entre la PaCO₂ et la PACO₂ ([a-A]CO₂) est très faible (2 à 5 mmHg) en condition normale et reste donc négligeable ; ce gradient est dû à la dilution de la concentration effective en CO₂ par les gaz de l’espace mort (espace mort anatomique lié à l’arbre aérifère des voies aériennes supérieures aux bronchioles terminales et espace mort alvéolaire lié au volume alvéolaire non perfusé), ainsi que par la vidange inégale des alvéoles [4, ¹³, ¹⁵, 20, 21]. Le sang artériel pulmonaire, riche en CO₂, arrive en continu aux capillaires, donc aux alvéoles pulmonaires. En situation normo-physiologique, le gaz expiré en fin d’expiration (PEtCO₂ ou EtCO₂), mesuré par la capnographie, est assimilé au gaz alvéolaire non dilué par les gaz inspiratoires. La membrane alvéolaire est le lieu des échanges entre les gaz contenus dans le sang et ceux contenus dans l’air respiré, ces échanges sont passifs et gouvernés par le rapport entre la ventilation et la perfusion pulmonaire (V/Q). Physiologiquement, ce rapport est de 0,8 (la perfusion excède légèrement la ventilation). Ainsi, les échanges de CO₂ dans la membrane alvéolaire dépendent directement du rapport ventilation/perfusion, et toute anomalie de la perfusion ou de la ventilation (anomalie du rapport V/Q) entraîne une modification du gradient artério-alvéolaire [a-A] CO₂ [1, ¹³, ¹⁵]. La capnographie peut donc ainsi fournir des informations sur le métabolisme, la perfusion et la ventilation.

Mesure capnographique

1. Aspects techniques

La mesure du CO₂ dans les gaz respiratoires peut être effectuée selon différentes méthodes, la plus utilisée en anesthésie vétérinaire est fondée sur la spectrophotométrie d’absorption en infrarouge. Cette méthode repose sur l’absorption différentielle d’infrarouges émis, en fonction de la concentration en CO₂ [¹³, ¹⁵, 16]. Selon la localisation du capteur, le système de mesure est qualifié d’aspiratif (“sidestream”) ou de non aspiratif (“mainstream”) [1, ¹³, ¹⁵, 18].

• Dans un système sidestream, la chambre de mesure est connectée à l’échantillonneur localisé à proximité de la sonde orotrachéale par une tubulure d’échantillonnage ( et ). La possibilité d’effectuer une analyse simultanée multigaz, d’avoir un échantillonneur de petite taille et facile à manipuler sont les avantages du système sidestream. De plus, il est peu sensible aux interférences liées à la condensation, et son calibrage est normalement automatique. Cependant, ce système présente différents inconvénients comme un délai de réponse de une à trois secondes, une possible oblitération du tube d’échantillonnage par des sécrétions ou des condensations, une dilution du CO₂ par des fuites, ou une modification artéfactuelle de la courbe lors de fréquences respiratoires très élevées, lors d’un petit volume courant chez les très petits animaux ou lors de l’élimination des gaz aspirés [1].

• Dans un système mainstream ou système en ligne, le capteur est directement situé à la sortie de la sonde orotrachéale, et nécessite donc l'intubation de l’animal ; l’émission et la réception différentielles des infrarouges absorbés se font directement au terminal de la sonde orotrachéale ( et ). Ce système permet un très court délai de réponse (de l’ordre de 100 ms) et il ne nécessite pas l’élimination des gaz échantillonnés. Il est cependant plus sensible à des interférences liées à la condensation et aux sécrétions. Il influence l’espace mort du circuit anesthésique (problème partiellement résolu par l’utilisation de microadaptateurs) et il ne peut analyser que le CO₂. En outre, par son propre poids, il peut couder la sonde orotrachéale ; il est plus fragile qu’un capteur de système sidestream.

Bien que présentant des avantages et des inconvénients respectifs, les systèmes sidestream et mainstream, sont deux méthodes fiables et équivalentes pour la mesure du CO₂ et l’évaluation de la fonction respiratoire () [¹³, ¹⁵, 18].

2. Capnogramme normal

Le capnogramme temporel, ou courbe capnographique en fonction du temps, est la représentation de la variation du CO₂ dans les gaz respiratoires au cours du temps [4, ¹³, ¹⁵].

La courbe capnographique normale est divisée en quatre phases, trois correspondant à l’expiration et une à l’inspiration () [1, 2, 3, 4, ¹³, 12, ¹⁵, 20] :

- phase I : il s’agit de la valeur expiratoire de base correspondant au début de l’expiration, donc à l’expiration des gaz de “l’espace mort absolu”, c’est-à-dire les gaz qui ne participent pas aux échanges gazeux. La valeur du CO₂ est nulle. Les anomalies correspondent en général à un dysfonctionnement du circuit anesthésique ;

- phase II : c’est une phase ascendante au cours de laquelle apparaît du CO₂ dans les gaz respiratoires et qui traduit l’évacuation du CO₂ alvéolaire et la diminution de l’espace mort ;

- phase III : c’est un plateau expiratoire qui correspond à l’expiration du CO₂ provenant uniquement des alvéoles. Il est légèrement ascendant en raison de la diffusion permanente du CO₂ des capillaires aux alvéoles et de la vidange inégale des alvéoles (vidange notamment plus lente des alvéoles, rapport V/Q bas). Le point le plus haut de la phase III (EtCO₂) se rapporte au gaz échantillonné en fin d’expiration et est assimilé au gaz alvéolaire (car il provient uniquement de la vidange des alvéoles) ;

- phase 0 : il s’agit de la phase inspiratoire. La concentration en CO₂ mesurée diminue brutalement jusqu’à 0, car les gaz inspirés ne doivent pas contenir de CO₂.

Chez l’homme, l’angle entre les phases II et III, ou angle a, est compris entre 100 et 110° et reflète le statut ventilation/perfusion (V/Q). L’angle entre les phases III et 0, ou angle α, est de 90° et est utilisé pour évaluer la réinhalation (inhalation des gaz exhalés au cycle respiratoire précédent) ; il augmente avec le degré de réinhalation [4].

Parfois, un pic est observé entre les phases III et 0 chez les animaux obèses ou en fin de gestation. Ce stade est nommé phase IV et est due à une vidange biphasique des alvéoles en raison de la faible compliance thoracique, d’un volume courant (volume gazeux mobilisé lors d’une inspiration ou d’une expiration physiologique) élevé et d’une fréquence respiratoire faible chez ces animaux () [4].

En parallèle au capnogramme temporel classique, il existe le capnogramme volumétrique qui donne une mesure du CO₂ selon le volume d’air expiré [2, 4]. Sa représentation graphique est nommée courbe SBT-CO₂ (single breath test). Par définition, cette dernière ne donne pas d’information sur la phase inspiratoire.

La courbe SBT-CO₂ est divisée en trois phases, correspondant à celles de la phase expiratoire du capnogramme temporel. Elle permet en outre de donner des informations sur les volumes courant respiratoire et d’espace mort lors d’association avec une gazométrie sanguine (PaCO₂) ().

L’obtention d’une courbe SBT-CO₂ nécessite une intubation trachéale, un système de ventilation avec spirométrie et un analyseur de type mainstream afin d’avoir une synchronisation entre l’analyse des volumes expirés et du CO₂. Par rapport à la capnographie temporelle, cette courbe permet une évaluation du rapport plus fine et fidèle (phase III de la courbe SBT-CO₂), ainsi que la mesure du volume de l’espace mort et la production du CO₂, mais elle est moins appropriée à la pratique clinique [2, 3].

Analyse du capnogramme

1. Méthode

L’interprétation des données de la capnographie repose sur l’utilisation simultanée de la valeur de la EtCO₂ et sur l’allure de la courbe. Une approche systématisée doit être utilisée, et repose sur cinq points [4, 12, ¹³, ¹⁵, 16, 20, 21] :

- l’identification d’une courbe et du CO₂ expiré. L’absence de courbe peut signifier un arrêt cardiaque ou respiratoire, la déconnection du circuit, une intubation œsophagienne, une apnée ou un dysfonctionnement de l’appareil. La capnographie est le paramètre de monitoring non invasif le plus précoce pour la reconnaissance d’une hypoventilation ;

- la reconnaissance, l’identification et la qualification des différentes parties de la courbe : la ligne de base (valeur, forme, durée), la montée expiratoire (pente, durée), le plateau alvéolaire (pente, durée, oscillations cardiogéniques, encoches, etc.) et la descente inspiratoire (pente, durée) ;

- la valeur de la EtCO₂ ;

- la mesure du gradient [a-Et]CO₂ (augmenté, diminué, stable) lorsque la mesure des gaz artériels est disponible ;

- la recherche et l’identification des causes de modification de la capnie.

2. Analyse de la valeur EtCO₂

La valeur normale de la EtCO₂ chez l’homme est comprise entre 35 et 45 mmHg (4,6 à 5,9 kPa), une valeur inférieure à 35 mmHg signifie une hypocapnie et une valeur supérieure à 45 mmHg une hypercapnie [12, ¹³, ¹⁵, 16]. Chez le chien, les valeurs normales de la capnographie sont situées entre 32 et 43 mmHg (avec une valeur moyenne de 37 mmHg), chez le chat, elles sont comprises entre 26 et 36 mmHg (avec une valeur moyenne de 31 mmHg) [11]. Tous les facteurs qui font varier la PaCO₂ peuvent modifier la EtCO₂ (métabolisme, débit cardiaque/ perfusion, ventilation). À ceux-ci se rajoutent les facteurs matériels et les erreurs préanalytiques [¹⁵, 16].

Diminution

La diminution de la EtCO₂ peut être progressive ou aiguë ().

• Une diminution progressive se rencontre lors d’hypothermie (diminution du métabolisme), d’approfondissement de l’anesthésie (diminution de la consommation en O₂, de la production de CO₂, donc de la EtCO₂) ou lors d’hyperventilation ().

• Une diminution brutale s’observe lors de déconnexion du circuit, mais aussi et surtout lors de certains états pathologiques comme un arrêt respiratoire, une baisse brutale de débit cardiaque (collapsus circulatoire) et enfin lors d’arrêt cardiaque ou respiratoire ().

La diminution de ETCO₂ peut accompagner une baisse de la PaCO₂, être potentiellement responsable d’une alcalose respiratoire, et entraîner rapidement une hypoperfusion cérébrale par vasoconstriction.

Augmentation

L’augmentation de la EtCO₂ peut être progressive ou aiguë ().

• Une augmentation progressive se rencontre lors d’hyperthermie (augmentation du métabolisme) ou d’hypoventilation ().

• Une augmentation brutale est remarquée lors de levée d’occlusion vasculaire, d’injection rapide de bicarbonates, de convulsion (augmentation de l’activité musculaire), d’augmentation brutale du débit cardiaque (augmentation brutale mais temporaire de l’EtCO₂) ou lors d’hyperinsufflation traduisant le recrutement d’alvéoles atélectasiés ().

L’augmentation de la EtCO₂ peut accompagner celle de la PaCO₂ et être à l’origine d’une acidose respiratoire.

Facteurs influençant la EtCO₂

Certains facteurs inhérents au circuit ou aux conditions d’échantillonnage peuvent faire varier artéfactuellement la valeur de la EtCO₂.

Lors d’analyse par spectrophotométrie infrarouge, les facteurs de variation reconnus sont la pression atmosphérique, le taux de N₂O dans les gaz analysés, les halogénés, l’oxygène, la vapeur d’eau et les sérosités muqueuses.

En pratique, seule la vapeur d’eau et la présence de mucus ont une importance et peuvent être facilement évitées par un entretien minutieux des circuits anesthésiques et capnographiques ; les autres facteurs sont négligeables ou automatiquement corrigés par l’appareil de capnographie. Certains gaz comme le desflurane⁽¹⁾ nécessitent parfois des concentrations (supérieures à 10 %) susceptibles de modifier les valeurs de l’EtCO₂, mais ils ne sont pas utilisés de manière courante en anesthésie vétérinaire.

3. Analyse de l’allure de la courbe

Les différentes phases du capnogramme doivent être analysées en fonction de leur représentation physiologique normale [1, 2, 3, 4, ¹³, ¹⁵, 16].

Modifications de la phase I

La phase I représente la ligne de base et doit être normalement égale à 0. Une augmentation de la valeur de la ligne de base et observée lors de réinhalation du CO₂ expiré. Cette situation se rencontre lors de saturation de la chaux sodée, d’anomalie de fonctionnement des valves unidirectionnelles du circuit, d’un trop faible débit d’oxygène sur un circuit non recirculant (non réinhalatoire) (). Une augmentation concomitante de la ligne de base et de la EtCO₂ doit faire suspecter une contamination du capteur par des sécrétions ou un défaut de calibration du matériel.

Modifications de la phase II

Une phase II allongée et une pente moins raide signifie un retard de détection du CO₂. Il peut être de type mécanique lors d’obstruction du circuit par des sécrétions, de la condensation ou d’inflexion des tubulures, ou bien de type physiologique lors de vidange inégale des alvéoles pulmonaires dans le cas d’asthme, de bronchospasme, ou de bronchite ().

Modifications de la phase III

L’évaluation de la phase III prend en compte l’inclinaison, la taille et la forme du segment. Une augmentation de la pente (augmentation de l’angle α) met en évidence une obstruction pulmonaire ou une vidange incomplète des alvéoles lors des cycles précédents (asthme, pneumopathie obstructive, encombrement bronchique). Une encoche négative au cours de la phase III signale une ventilation spontanée lors de ventilation contrôlée () ; cela est couramment observé chez les animaux curarisés, mais également lors d’hypoxémie, d’hypercapnie ou d’anesthésie superficielle. Une encoche à la fin de la phase III indique une dilution de l’EtCO₂ par des gaz frais lorsque le débit expiratoire en fin d’expiration est moins important que le débit d’air frais entrant ; cette encoche, ou un plateau tronqué associé à une hypocapnie, peut également marquer un sous-gonflage du ballonnet de la sonde orotrachéale ou un flux d’oxygène trop important (). Une diminution de la hauteur de plateau avec une courbe normale signifie une vidange simultanée des alvéoles perfusées et non perfusées, mais peut aussi se rencontrer lors de diminution de la pression systémique ou pulmonaire, d’hypothermie, d’hyperventilation ou d’augmentation de l’espace mort ventilatoire. L’inspiration commence à la fin de la phase III, cependant, dans certains cas comme lors de réinhalation due à un dysfonctionnement d’une valve unidirectionnelle du circuit, le début d’inspiration peut se superposer avec le plateau de la phase III. L’utilisation conjointe d’une courbe de spirométrie et d’un analyseur de type mainstream (pour s’affranchir du temps d’analyse) ou d’une capnographie volumétrique permet de contourner ce phénomène.

Modifications de la phase O

Un allongement de la phase 0 révèle une fuite sur le circuit expiratoire ou un phénomène de réinhalation lors de débit d’oxygène insuffisant. De manière physiologique, de multiples oscillations d’amplitudes décroissantes, dites oscillations cardiogéniques peuvent être observées (). Elles sont dues aux battements cardiaques, et notamment aux dilatations diastoliques, à proximité des poumons, entraînant une vidange pulsatile des alvéoles perfusées (celles dans lesquelles le CO₂ diffuse de manière continue). Ce phénomène s’observe essentiellement lors d’utilisation de circuit à faible résistance ou lors de basse fréquence respiratoire. Il est plus marqué en phase inspiratoire compte tenu de l’augmentation de la fréquence cardiaque liée à l’arythmie sinusale respiratoire.

4. Mesure du gradient [a-Et]CO₂

Physiologiquement, le gradient [a-Et]CO₂ est proche et corrélé au gradient alvéolo-capillaire en CO₂ ([a-A]CO₂). La valeur physiologique du premier est de 5 mmHg au maximum.

Le gradient se calcule en faisant la différence entre la PaCO₂ mesurée lors de gazométrie artérielle et la EtCO₂ [4, ¹⁵]. Toute anomalie du gradient traduit une anomalie du rapport V/Q.

Augmentation du gradient [a-Et]CO₂

Une augmentation du gradient [a-Et]CO₂ est rencontrée lors d’anomalie de la ventilation et de la perfusion (anomalie du rapport V/Q) ou lors de lésions respiratoires empêchant une vidange complète des alvéoles pulmonaires [4, 9, 10, ¹⁵]. Cela correspondant à une augmentation de l’espace mort (état de bas débit : hypotension, bradycardie, choc, hypothermie, thromboembolie pulmonaire ; diminution de la compliance pulmonaire : asthme, pneumopathie obstructive).

[a-Et]CO₂ normal ou diminué

Les situations à l’origine d’un gradient en CO₂ normal ou diminué, lors d’anomalie du rapport V/Q, correspondent aux effets shunt. Une inversion du gradient peut être observée chez l’homme lors d’état gravide, chez les patients obèses ou lors de réinhalations importantes de CO₂ [4, 9, 10, 17].

L’EtCO₂ est un bon reflet de la PaCO₂, sauf chez les animaux hémodynamiquement instables ou atteints de pneumopathie sévère.

5. Applications cliniques

Détection d’apnée

L’apnée se matérialise par une absence de CO₂ exhalé. Elle est par conséquent détectée immédiatement par la capnographie. Ainsi, une apnée est rapidement et effectivement repérée par un capnographe, et, ce, beaucoup plus rapidement que par l’oxymétrie du pouls.

Confirmation de la localisation d’une sonde

Le CO₂ est éliminé exclusivement par voie pulmonaire. Ainsi, la mesure par capnographie du taux de CO₂ à la sortie de la sonde permet de confirmer sa position (). Hors contexte d’arrêt cardiorespiratoire, un taux de CO₂ nul se rencontre lors de sondage œsophagien, alors que la présence de CO₂ indique une position trachéale de la sonde. Certains faux positifs existent néanmoins, et il est possible de détecter initialement du CO₂ dans les voies digestives lors d’aérophagie ou de ventilation préalable au masque. Il est conseillé de confirmer la position de la sonde après six mouvements respiratoires.

Chez l’homme, une excrétion de CO₂ est fréquemment décrite après l’administration d’anti-acides digestifs. La mesure du CO₂ à la sortie d’une sonde permet donc de manière efficace de confirmer ou d’infirmer la position d’une sonde trachéale ou d’alimentation.

Capnographie et ventilation assistée

Le CO₂ est un bon reflet du métabolisme et son expiration dépend de la ventilation et de la perfusion de l’animal. Ainsi, lors d’anesthésie et de ventilation assistée, le taux de CO₂ mesuré permet de déterminer précisément la fréquence et le volume courants nécessaires pour adapter une ventilation adéquate au métabolisme.

Les valeurs cibles alors recherchées pour la EtCO₂ sont les valeurs physiologiques, c’est-à-dire situées entre 32 et 43 mmHg (avec une valeur moyenne de 37 mmHg) chez le chien, et entre 26 et 36 mmHg (avec une valeur moyenne de 31 mmHg) chez le chat.[11].

Le CO₂ expiré permet non seulement de régler le ventilateur de la manière la plus pertinente possible, mais également de s’adapter à la physiologie propre de chaque individu et aux conditions pathologiques de chaque chirurgie (notamment les chirurgies intracranienne ou thoracique) [1, 2, 4, 7, 9, 11, 12, ¹³, 14, 16].

Capnographie en soins intensifs et en réanimation cardiovasculaire

Chez l’animal comme chez l’homme, la capnographie est un outil sensible, spécifique et prédictif en réanimation. Les variations de l’EtCO₂ dues à des variations métaboliques sont négligeables d’un point de vue quantitatif. Ainsi, toute variation de l’EtCO₂ traduit celle du débit pulmonaire, donc du débit cardiaque.

Une chute brutale du taux de CO₂ signifie une diminution du débit pulmonaire, donc du débit cardiaque, puis un arrêt cardiovasculaire. Au contraire, une augmentation de l’EtCO₂ au cours d’une réanimation cardio-cérébro-pulmonaire traduit une reprise de l’activité circulatoire [5, 14, 16, 19, 20, 21].

Lors d’arrêt respiratoire primitif et de ventilation manuelle, sont observées une augmentation du taux de CO₂ (due à son accumulation lors de l’arrêt respiratoire), puis sa chute brutale quand l’arrêt respiratoire se complique d’un arrêt cardiovasculaire, et enfin son augmentation progressive lors d’efficacité des mesures de réanimation.

L’absence de CO₂ exhalé durant le massage cardiaque signifie un mauvais positionnement de la sonde orotrachéale ou un massage cardiaque inefficace [4, 19, 20, 21].

Le suivi d’une réanimation cardio-cérébro-pulmonaire est un vrai défi. De nombreux phénomènes, regroupés sous le nom de “syndrome postréanimation” (défaut de reperfusion, lésion de reperfusion, essaimage de toxines ischémiques, coagulopathie, etc.) sont à l’origine de lésions délétères pouvant entraîner un nouvel arrêt cardiorespiratoire. Ainsi, près de 65 à 68 % des chiens et 22 à 38 % des chats ayant présenté un arrêt cardiaque rechutent [22]. Le suivi d’une réanimation efficace doit pouvoir prendre en compte ces complications.

De plus, plusieurs études tendent à montrer que le CO₂ exhalé est corrélé à la perfusion coronaire et cérébrale, et qu’un taux de CO₂ inférieur à 10 mmHg, 20 minutes après une réanimation, est un élément prédictif d’échec de la réanimation (100 % de mortalité [16]).

Au contraire, une EtCO₂ initiale supérieure à 15 mmHg représente un bon indicateur de la reprise d’une activité circulatoire (71 % d’animaux réanimés avec une spécificité de 98 %) [5, 19, 20, 21].

L’hyperventilation, au cours de manœuvres de réanimation et en postréanimation, doit être contrôlée de manière aussi importante que l’hypoventilation. Elle peut aboutir à un épuisement de la fonction respiratoire et à des lésions cérébrales par vasoconstriction quand la PaCO₂ se trouve en dessous d’une valeur comprise entre 24 et 28 mmHg [14].

Une valeur basse de l’EtCO₂ n’est pas le seul critère à prendre en compte pour arrêter une réanimation, car, notamment, l’EtCO₂ diminue après l’injection d’adrénaline et augmente après l’injection de bicarbonates [¹⁵, 16]. La capnographie doit faire partie intégrante du monitoring en réanimation.

La capnographie est un moyen simple, fiable et peu invasif de surveillance de l’anesthésie. Elle permet aussi bien d’évaluer la perfusion, la ventilation et le métabolisme d’un individu que le matériel anesthésique ou ventilatoire.

Elle devrait faire partie de tout monitoring anesthésique car elle peut de manière rapide, sensible et à un coût modéré, prévenir ou détecter précocement la plupart des accidents et incidents anesthésiques. Son interprétation est relativement simple, mais doit se faire de manière systématisée.

Même si la EtCO₂ ne reflète pas toujours la PaCO₂, en cas de situation pathologique, il existe une forte corrélation entre les deux, et la capnographie est un bon outil pour détecter les tendances de variation de la PaCO₂.

Outre son intérêt lors d’anesthésie, la capnographie permet, seule ou associée à une gazométrie artérielle, le diagnostic de pneumopathie obstructive, de thromboembolie pulmonaire, ainsi que le suivi d’une réanimation cardio-pulmono-cérébrale d’animaux en soins intensifs.

• (1) Médicament à usage humain visé par l’arrêté ministériel du 7 février 2007.

Références

• 3 - Bhavani-Shankar K, Philip JH. Defining segments and phases of a time capnogram. Vet. Anesth. Analg. 2000;91:973-977.
• 12 - Hackett TB. Pulse oximetry and end tidal carbon dioxide monitoring. Vet. Clin. North Am. Small Anim. Pract. 2002;32:1021-1029.
• 13 - Henao-Guerrero PN, Hodgson DS, Mason DE. Capnography in veterinary medicine. Vet. Anaesth. Analg. 2005;32:233-235.
• 15 - Marshall M. Capnography in dogs. Comp. Cont. Educ. Pract. Vet. 2004;761-778.
• 18 - Teixeira Neto FJ, Carregaro AB, Mannarino R et coll Comparison of a sidestream capnograph and a mainstream capnograph in mechanically ventilated dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 2002;221:1582-1585.